Beschreibung
CLIA für den qualitativen Nachweis spezifischer IgG und IgM Antikörper gegen Leishmania infantum in humanem Serum oder Plasma.
LOINC
(Logical Observations, Identifiers, Numbers and Codes
(Regenstrief-Institute))
7958-2
Ziel und Zweck der Untersuchung
Die Parasiten existieren in zwei Formen, der amastigoten Form (in den Phagolysosomen der Makrophagen des Wirts) und der promastigoten Form (im Stechrüssel der Mücke). In den Makrophagen bilden sie runde, unbewegliche Amastigoten (3-7 mm Durchmesser). Die Makrophagen werden während des Blutmahls von der Mücke aufgenommen und die Amastigoten im Magen freigesetzt. Dort entwickeln sie sich zur beweglichen, elongierten (10-20μm), Flagellen tragenden promastigoten Form. Diese vermehrt sich und wandert in die Speicheldrüsen des Insekts. Gegenwärtig sind etwa 12 Millionen Menschen in 88 Ländern, von denen 72 zu den Entwicklungsländern zählen, von Leishmaniosen betroffen. Die jährliche Inzidenz an Neuerkrankungen liegt bei etwa 2 Millionen (ca. 1-1,5 Millionen Fälle kutane Leishmaniose,500.000 Fälle viszerale Leishmaniose). Schwere Beeinträchtigungen des Immunsystems (z. B. HIV) erhöhen das Risiko eine viszerale Verlaufsform zu entwickeln. Infektionen mit Leishmanien können mittel Mikroskopie bzw Serologie (Hämagglutination, Immunfluoreszenz aber auch ELISA wie in diesem Test) nachgewiesen werden.
Prinzip des Verfahrens
automatisierter Chemolumineszenzassay
Literatur
1.) WHO. 1990. Control of the Leishmaniases. Report of a WHO Expert Committee. Geneva: Health Organization, Technical Report Series, No. 793. 2.) Marsden, P.D. 1984. Selective primary health care: strategies for control of disease in the developing world. XIV. Leishmaniasis, Rev. Inf. Dis. 6:736-744 3.) Ashford, D.a., Baduro, R. Eulalio, C., Freire, M., Miranda, C., Zalia, M.G. and David, J.R. 1993. Studies on the control of visceral leishmaniasis: validation of the falcon assay screening test-enzyme-linked immunosorbent assay (FAST-ELISA a) for field diagnosis of canine visceral leishmaniasis. Am. J. Med. Hyg. 48(1):1-8. 4.) Neogy, A.B., Vouldoukis, A.S., Otamires, Y., Tselentis, J.C., Lascombe, T., Segalen, D. Rzepka, D. and Monour, L. 1993. Serodiagnosis and screening of canine visceral leishmaniasis in an endemic area of Corsica: Applicability of a direct agglutination test and immunoblot analysis. Am J Trop Med Hyg. 47:772-777. 5.) Evans, T.G., Vasconcelos, I.A.B., Lima, J.N., Teixeira, J.M., McAullife, I.T., Lopes, U.G., Pearson, R.D., Vasconcelos, A.W. 1990. Canine visceral leishmaniasis in northeast brazil: assessment of serodiagnosis methods. Am. J. Trop. Med. Hyg. 42: 1118-123. 6.) WHO. Report of the consultative Meeting on HIV/Leishmania co-infections. Rome, 1994. Allain, D.S. and Kagan, I.G. 1975. A direct agglutination test for leishmaniasis. Am.J.Trop.Med.Hyg
Ergebniseinheit
qualitativ
mIU/ml
Referenzbereich
negativ
Analysenfrequenz
wöchentlich
Nachforderungsmöglichkeit der Analyse
5 Tage
Spezimen
Serum
Alternative Spezimen
(lt. Beipack)
Plasma
Mindestvolumen pro Anforderung vor Zentrifugation
(vor Zentrifugation)
2 ml
Abnahmegefäß inkl. Zusatzstoffe
Serum Monovette
Messbereich
qualitativ
Allgemeine Störungen
(z.B. Lipämie, Hämolyse, Bilirubinämie)
Hämolytische, lipämische und ikterische Proben ergaben keine Interferenzen im vorliegenden ELISA.
Kreuzreaktionen
(z.B. immunologisch)
Keine Kreuzreaktion mit Toxoplasma gondii, Kreuzreaktionen mit Trypanosoma cruzi können in Endemiegebieten auftreten.
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